Статті
Постійне посилання на розділhttps://dspace.nuft.edu.ua/handle/123456789/7372
Переглянути
2 результатів
Результати пошуку
Документ Destruction of biofilms under the influence of Acinetobacter calcoaceticus IMV B-7241 surfactants, synthesized in the presence of competitive microorganisms(2022) Pirog, Tatiana; Ivanov, MykytaIntroduction. The aim of this study was to investigate the role of surfactants synthesized by Acinetobacter calcoaceticus IMV B-7241 in media with glycerol in the presence of biological inductors in destruction of biofilms. Materials and methods. Cultivation of A. calcoaceticus IMV B-7241 was carried out in a mineral medium using refined glycerol or crude glycerol, the waste of biodiesel production, as carbon sources. Biological inductors were introduced as live or inactivated cells of Bacillus subtilis BT-2, as well as the supernatant after strain BT-2 cultivation. Surfactants were extracted from the supernatant of the culture liquid with a modified mixture of Folch (chloroform and methanol, 2:1). The degree of biofilm destruction in the presence of surfactants was determined by spectrophotometric method. Results and discussion. Regardless of the substrate used, the introduction of both live and inactivated cells of B. subtilis BT-2 into medium used for cultivation of A. calcoaceticus IMV B-7241 was accompanied by the synthesis of surfactants, the degree of biofilm destruction of which was higher than those obtained in the medium without an inductor. The degree of destruction of bacterial and yeast biofilms achieved by the action of A. calcoaceticus IMV B-7241 surfactants obtained on refined glycerol in the presence of inductor cells was 36.5–85% and was 1.5-3 times higher compared to using surfactants synthesized in medium without inductors. Note that, surfactants synthesized in the presence of biological inductors destroyed biofilms of the test cultures at fairly low (7.5–960 μg/ml) concentrations. Similar results were observed for the usage of surfactants obtained on the waste of biodiesel production. Therefore, introduction of live cells of B. subtilis BT-2 into the medium with the crude glycerol was accompanied by synthesis of surfactants, which at concentration 1.8-960 μg/ml caused destruction of B. subtilis BT-2, Proteus vulgaris PA-12 and Enterobacter cloacae C-8 biofilms at 30.1–80.7% and was higher than using similar surfactant concentrations obtained during cultivation without inductors (24.1–75%). The destruction of biofilms of Staphylococcus aureus BMS-1, Candida albicans D-6 and Candida tropicalis PE-2 under the action of surfactants (1.8-960 μg/ml) synthesized on crude glycerol in the presence of both live or inactivated cells of B. subtilis BT-2 was 1.5–8 times higher than surfactants synthesized in medium without inductor. Conclusion. The possibility to regulate the ability to destroy bacterial and yeast biofilms of surfactants synthesized by A. calcoaceticus IMV B-7241 by introducing into the medium competitive bacteria B. subtilis BT-2 was found.Документ Здатність штамів S. Aureus формувати біоплівки на колагенових матрицях(2020) Юнгін, Ольга Сергіївна; Майстренко, Леся Анатоліївна; Ребрикова, Поліна Андріївна; Дука, І. В.На сьогодні стимуляція загоєння ран у хірургії, комбустіології, дерматології залишається актуальною проблемою. Незважаючи на постійне удосконалення методів лікування ран, частота інфекційних ускладнень у хірургії досягає 30%, а в комбустіології — 40%. Бактеріальні біоплівки є критичним компонентом хронічних ран, які важко піддаються традиційній терапії. Золотистий стафілокок — один із чотирьох найбільш поширених видів бактерій, виявлених при хронічних ранах. Колаген є перспективною основою препаратів для загоєння ран, а також ідеальним матриксом при дослідженні інфекційних процесів шкіри та сполучних тканин. У статті оцінено здатність формувати біоплівки штамами S. aureus на колагенових матрицях, отриманих з відходів виробництва натуральної шкіри (голинна обрізь після зоління та після знезолювання, міздря із сировини великої рогатої худоби). Колаген отримували методом кислої екстракції з подальшим відмиванням 0,9% NaCl до отримання рН 5.5. Як тест-культури використовували лабораторні штами та шпитальні ізоляти S. aureus. Штами було ізольовано з раневих поверхонь пацієнтів Київської обласної клінічної лікарні. Бактерії ідентифіковано як Staphylococcus aureus за допомогою VITEK 2 compact 15 (Франція). Ріст культур і біоплівкоутворення визначали за стандартними протоколами. Отримані дані проаналізовано в пакеті програм Excel, p<0,05. Здатність формувати біоплівку варіювала залежно від зразка колагену та штаму мікроорганізму, однак досліджувані зразки колагену виявилися ефективними матрицями для формування біоплівок культурами бактерій. Зразки колагену, отримані з відходів виробництва натуральної шкіри (голинна обрізь після зоління та після знезолювання після двох екстракцій), можуть бути використані як матриці для росту і формування біоплівок штамами золотистого стафілококу та моделювання мікробних процесів при дослідженні лікування раневих поверхонь. Nowadays stimulation of wound healing in surgery, combustiology, dermatology remains an urgent problem. Despite the constant improvement of wound treatment methods, the frequency of infectious complications in surgery reaches 30%, and in combustiology — 40%. Bacterial biofilms are a critical component of chronic wounds which are difficult to treat with traditional therapies. Staphylococcus aureus is one of the four most prevalent bacterial species identified in case of chronic wounds. Collagen is a promising basis for drugs for wound healing as well as an ideal matrix in the study of infectious processes of the skin and connective tissues. The aim of the work was to evaluate the biofilm-formation ability of opportunistic infections pathogens on collagen matrices obtained from leather industry waste (limed pelt, delimed pelt and fleshings of cattle hides). Collagen samples were obtained by acid extraction followed by washing with 0.9% NaCl to obtain pH of 5.5. Laboratory strains and hospital isolates of S. aureus were used as test cultures. The strains were isolated from the wound surfaces of patients of the Kyiv Regional Clinical Hospital. The bacterium was identified as Staphylococcus aureus using VITEK 2 compact 15 (France). Culture growth and biofilm-formation ability were determined according to standard protocols. The obtained data were analyzed in the Excel software package, p<0.05. The biofilm-formation ability varied depending on the collagen sample and the strain, however, the studied collagen samples proved to be effective matrices for biofilm formation. Collagen samples obtained from leather industry waste (limed pelt, delimed pelt and fleshings after two extractions) can be used as matrices for the growth and biofilm formation of S. aureus strains and modeling of microbial processes in the wound healing studies.